ATAC-Seq(assay for transposase-accessible chromatin with sequencing)은 유전체 전체의 크로마틴 접근성 평가를 위한 주요한 방법입니다. ATAC-Seq을 사용하면 열린 크로마틴 영역을 시퀀싱해 크로마틴 포장을 비롯한 여타 요인이 유전자 표현형에 어떤 영향을 미치는지 알아낼 수 있습니다.
ATAC-Seq은 조절 요소에 대한 사전 지식이 필요 없는 강력한 후성유전학적 발견 도구입니다. 복합 질환, 배아 발생, T세포 활성화 및 암에서 크로마틴 접근성, 전사 인자 결합 및 유전자 조절을 더 잘 이해하는 데 사용되어 왔습니다.1,2 ATAC-Seq은 벌크 세포 집단 또는 단일세포에서 고해상도로 수행할 수 있습니다.
ATAC-Seq을 사용한 크로마틴 접근성 분석은 유전체의 조절 환경에 대한 귀중한 통찰을 제공할 수 있습니다. 주요 애플리케이션에는 다음이 포함됩니다.
또한 ATAC-Seq은 RNA 시퀀싱과 같은 다른 방법과 결합하여 유전자 발현 연구에 대한 멀티오믹스 접근 방식을 사용할 수 있습니다.3 후속 실험에는 종종 ChIP-Seq, Methyl-Seq 또는 Hi-C-Seq이 포함되어 후성유전학적 조절 형태를 더욱 자세하게 규명합니다.
"ATAC-Seq을 사용하면 이전에는 전체 유전체 수준에서 관찰할 수 없었던 복잡하거나 희귀한 조직의 후생유전학적 변이성과 세포 집단의 후생유전학적 환경에 대해 질문할 수 있습니다."
Greenleaf 박사와 그의 연구팀이 ATAC-Seq을 개발한 방법과 박사가 이 기술이 언젠가 암 및 자가면역 질환의 개발 및 치료에 대한 새로운 통찰을 제공할 것이라고 믿는 이유에 대해 알아보세요.
인터뷰 읽어보기다음 ATAC-Seq 프로토콜을 권장합니다. Buenrostro J, Wu B, Chang H, Greenleaf W. ATAC-seq: a method for assaying chromatin accessibility genome-wide. Curr Protoc Mol Biol. 2015;109:21.29.1-21.29-9.
TDE1 효소 및 버퍼 키트는 현재 Illumina에서 별도로 구입할 수 있습니다(카탈로그 번호 20034197 및 20034198). 효소 및 버퍼 농도를 포함한 프로토콜의 다른 모든 단계는 동일하게 유지됩니다.
프로토콜 보기단일세포 ATAC-Seq은 단일세포의 구획화 및 바코드를 Tn5 tagmentation과 결합합니다. Tn5 전위효소는 시퀀싱 어댑터로 열린 크로마틴 영역에 태그를 지정합니다. 그런 다음 태그가 지정된 DNA 절편을 정제, 증폭 및 시퀀싱합니다.
단일세포 시퀀싱에 대해 더 알아보기ATAC-Seq에 필요한 최소 시퀀싱 커버리지는 연구 목적에 따라 다릅니다. 이 표는 일반적인 애플리케이션에 대한 몇 가지 가이드라인을 제공합니다.
ATAC-Seq용 페어드 엔드 리드(paired-end·reads) 사용을 권장합니다. 싱글 리드 시퀀싱과 비교할 때 페어드 엔드 리드는 다음을 제공합니다.
연구 목표 | 권장 뎁스(depth) |
---|---|
인간 샘플의 열린 크로마틴 차이 식별 | ≥ 50 M 페어드 엔드 리드 |
유전자 조절 네트워크 구성을 위한 전사 인자 풋 프린팅 | > 200 M 페어드 엔드 리드 |
단일세포 분석 | 핵/세포당 25–50 K 페어드 엔드 리드 |
실험 요건이 다양할 수 있으므로 과학 문헌을 참조하여 프로젝트에 적합한 커버리지 수준을 결정하는 것이 좋습니다.
이 웨비나에서는 유전체 차원의 크로마틴 접근성 프로파일링에 ATAC-seq을 사용하는 방법과 이 기술이 다른 크로마틴 접근성 프로파일링 방법과 어떻게 어울리는지를 알아봅니다. William Greenleaf가 ATAC-seq의 개발, 사용 및 단일세포에 대한 적응에 대해 논의합니다. Bing Ren과 Sebastian Preissl이 조합 인덱싱을 사용한 단일세포 ATAC-Seq 및 뇌, 심장 및 기타 조직에 대한 적용에 대해 논의합니다.
웨비나 보기Transposition of native chromatin for fast and sensitive epigenomic profiling of open chromatin, DNA-binding proteins and nucleosome position.
Buenrostro JD, Giresi PG, Zaba LC, et al.
Nat Methods. 2013;10(12):1213-1218.
Epigenome-wide study uncovers large-scale changes in histone acetylation driven by tau pathology in aging and Alzheimer’s human brains.
Klein HU, McCabe C, Gjoneska E, et al.
Nat Neurosci. 2019;22(1):37-46.
Epigenetic control of innate and adaptive immune memory.
Lau CM, Adams NM, Geary CD, et al.
Nat Immunol. 2018;19(9):963-972.
Multiplex single-cell profiling of chromatin accessibility by combinatorial cellular indexing.
Cusanovich DA, Daza R, Ade A, et al.
Science. 2015;348(6237):910-914.
Single-cell chromatin accessibility reveals principles of regulatory variation.
Buenrostro JD, Wu B, Litzenburger UM, et al.
Nature. 2015;523(7561):486-490.
Droplet-based combinatorial indexing for massive-scale single-cell chromatin accessibility.
Lareau CA, Duarte FM, Chew JG, et al.
Nat Biotechnol. 2019;37(8):916-924.
참고 문헌